PENGUMPULAN SPESIMEN DALAM PEMERIKSAAN HEMATOLOGI DAN HEMOSTASIS 1. menjelaskan pertimbangan jaminan kualitas yang berhubungan dengan pengambilan spesimen darah dengan venipuncture, oleh tusukan kulit, dan dari kateter dalam pemeriksaan hematologi dan hemostasis. 2. menggambarkan tindakan pencegahan yang diperlukan selama spesimen darah pengolahan dan penanganan untuk memastikan hematologi dan hemostasis hasil tes yang valid Pengumpulan spesimen darah yang tepat adalah langkah pertama dalam memastikan hasil yang akurat dan dapat diandalkan dari pemeriksaan laboratorium klinis. Bab ini berfokus pada aspek-aspek pengambilan spesimen darah yang dapat mempengaruhi validitas hasil pemeriksaan hematologi dan hemostasis. Spesimen darah untuk pemeriksaan hematologi dapat diperoleh dengan menggunakan metode venipuncture , oleh tusukan kulit ( kapiler ), atau dari kateter, dengan memperhatikan pemantapan mutu dari masing-masing metode ini. Terlepas dari metode yang digunakan , pengumpulan spesimen membutuhkan pengetahuan tentang peralatan yang diperlukan dan keterampilan teknis, mengutamakan kenyamanan dan keselamatan pasien dan identifikasi spesimen, kesadaran dan kepatuhan terhadap persyaratan keselamatan institusional, dan transportasi spesimen serta teknik pengolahan yang tepat. Pengumpulan spesimen darah , atau proses pengambilan darah, adalah keterampilan dipraktekkan oleh banyak anggota tim kesehatan termasuk phlebotomists , teknisi
64
Embed
Pengumpulan Spesimen Dalam Hematologi Dan Hemostasi1
This document is posted to help you gain knowledge. Please leave a comment to let me know what you think about it! Share it to your friends and learn new things together.
Transcript
PENGUMPULAN SPESIMEN DALAM PEMERIKSAAN HEMATOLOGI DAN
HEMOSTASIS
1. menjelaskan pertimbangan jaminan kualitas yang berhubungan dengan pengambilan
spesimen darah dengan venipuncture, oleh tusukan kulit, dan dari kateter dalam
pemeriksaan hematologi dan hemostasis.
2. menggambarkan tindakan pencegahan yang diperlukan selama spesimen darah
pengolahan dan penanganan untuk memastikan hematologi dan hemostasis hasil tes
yang valid
Pengumpulan spesimen darah yang tepat adalah langkah pertama dalam
memastikan hasil yang akurat dan dapat diandalkan dari pemeriksaan laboratorium
klinis. Bab ini berfokus pada aspek-aspek pengambilan spesimen darah yang dapat
mempengaruhi validitas hasil pemeriksaan hematologi dan hemostasis. Spesimen
darah untuk pemeriksaan hematologi dapat diperoleh dengan menggunakan metode
venipuncture , oleh tusukan kulit ( kapiler ), atau dari kateter, dengan memperhatikan
pemantapan mutu dari masing-masing metode ini. Terlepas dari metode yang
digunakan , pengumpulan spesimen membutuhkan pengetahuan tentang peralatan
yang diperlukan dan keterampilan teknis, mengutamakan kenyamanan dan
keselamatan pasien dan identifikasi spesimen, kesadaran dan kepatuhan terhadap
persyaratan keselamatan institusional, dan transportasi spesimen serta teknik
pengolahan yang tepat. Pengumpulan spesimen darah , atau proses pengambilan
darah, adalah keterampilan dipraktekkan oleh banyak anggota tim kesehatan termasuk
phlebotomists , teknisi laboratorium klinis, ilmuwan , dokter dan perawat. Istilah
phlebotomist yaitu setiap individu yang melakukan tindakan pengambilan darah dan
bertanggung jawab terhadap proses pengumpulan spesimen darah tersebut.
Kewaspadaan universal harus diikuti ketika mengumpulkan dan memproses semua
spesimen darah. semua phlebotomists harus mematuhi dan menjalankan tindakan
pencegahan ini.
PENGAMBILAN SPESIMEN DARAH DENGAN VENIPUNCTURE
Teknik yang paling umum digunakan untuk mendapatkan spesimen darah
adalah venipuncture. Bagian ini akan membahas tentang peralatan dan anti koagulan
yang digunakan dalam venipuncture, prosedur, dan hal-hal yang mempengaruhi
kualitas hasil pemeriksaan.
Peralatan
Pengumpulan specimen dengan system tabung evacuated .pengumpulan specimen
yang paling rutin digunakan adalah dengan menggunakan tabung kaca evacuated atau
tabung pengumpul terbuat dari plastik, dengan jarum yang lancip dan miring di kedua
ujungnya, dan pemegang jarum (lihat Gbr.2-1). Tabung evacuated (tidak mengandung
air) sehingga ketika sumbat karetnya ditusuk, darah secara otomatis tertarik ke dalam
tabung. Beberapa ukuran tabung evacuated yang tersedia, dan pemegangnya dalam
berbagai ukuran untuk mencocokkan diameter tabung yang digunakan. Sebagian
besar laboratorium, menggunakan tabung evacuated yang berukuran 5 atau 7 ml
untuk pengumpulan spesimen darah orang dewasa. Namun untuk pasien anak
umumnya digunakan tabung ukuran (2-3ml) biasanya cukup mengandung darah atau
serum untuk memenuhi sebagian persyaratan untuk pemeriksaan dan akan
mengurangi jumlah darah yang diambil dari orang dewasa sebesar 40% sampai 45%
jika mereka digunakan untuk dewasa pasien. Tabung bisa bebas dari zat aditif atau
dapat juga mengandung aditif yang berfungsi sebagai antikoagulan, pengawet,
penguat koagulasi, atau sebagai fasilitator untuk memisahkan sel dari serum atau
plasma. Zat aditif specific yang terkandung dalam tabung ditunjukkan dengan warna
stopper karet (lihat tabel 2-1). Informasi label tabung harus diperiksa dalam berbagai
situasi di mana warna stopper tabung yang sama mungkin mengandung aditif yang
berbeda. Tabung evacuated sebaiknya tidak digunakan setelah tanggal kadaluwarsa
yang tertera,udah lewat masa nya mungkin dapat kehilangan kekuatan vaccum atau
efektivitas aditifnya. Tabung untuk prosedur khusus juga tersedia (misalnya, tabung
khusus untuk Westergren penentuan laju endap darah;. Bab.9)
TINDAKAN PENCEGAHAN BAHAYA BIOLOGIS
Perhatian khusus diperlukan untuk menghindari resiko infeksi dari berbagai
patogen pada semua aspek dari praktik laboratorium serta prosedur keselamatan kerja,
yang dijelaskan dalam bab 24, hal ini harus dilakukan saat pengambilan darah.
Operator harus mengenakan plastik disposibel atau sarung tangan karet sekali pakai.
Diharapkan juga untuk memakai pelindung apron atau gaun, serta jika diperlukan
menggunakan kacamata pelindung. Sikap waspada diperlukan untuk mencegah
cedera, terutama ketika menggunakan jarum suntik, jarum dan lancet. Jarum suntik,
jarum dan lancet yang telah digunakan tidak boleh digunakan kembali. Peralatan yang
bersifat re-usable harus disterilisasi setelah digunakan (Lihat Bab 24 dalam buku
Practical Haematology).
METODE SYRINGE (JARUM SUNTIK)
Pengumpulan spesimen darah dengan menggunakan jarum suntik melibatkan
penggunaan plastik atau kaca jarum suntik dan jarum yang diproduksi khusus untuk
digunakan dengan jarum suntik. jarum suntik kaca harus dihindari karena koagulasi
terinisiasi ketika kontak darah permukaan kaca diobati. Penggunaan jarum suntik
memungkinkan phlebotomist untuk mengontrol jumlah tekanan yang dibutuhkan
untuk mengeluarkan darah dari vena. ini sangat membantu dalam sulit untuk menarik
pasien atau pasien anak-anak atau dalam kasus-kasus ketika pembuluh darah kecil
harus digunakan. ukuran jarum suntik terkecil harus digunakan untuk volume
spesimen darah yang diperlukan untuk menghindari tekanan yang berlebihan. Selain
runtuh pembuluh darah, tekanan yang berlebihan dapat menyebabkan hemolisis,
sehingga menghasilkan spesimen darah yang tidak dapat diterima. Untuk koleksi
anak, jarum suntik 3ml atau tuberkulin dapat digunakan.
Jarum
pemilihan ukuran jarum tergantung pada ukuran dan kedalaman dari vena
pasien dan jumlah darah yang bisa ditarik. jarum ditunjuk oleh nomor gauge,
yang mengacu pada diameter dalam, atau bore jarum dan panjang. misalnya, jarum
21G1 memiliki sejumlah ukuran dari 21 dan 1 inci panjangnya dari ujung jarum
penyisipan ke dalam tabung jarum suntik. semakin tinggi gauge, diameter lebih kecil.
jarum yang are19 -23 mengukur biasanya digunakan untuk venipuncture rutin; 20 -22
jarum pengukur yang paling sering digunakan untuk orang dewasa, sedangkan 23
ukuran jarum dapat digunakan untuk vena pediatrik atau sulit. penggunaan jarum
pengukur tinggi telah dilaporkan sebagai penyebab hemolisis selama
venipuncture. Spesimen hemolyzed tidak bisa diterima untuk hematologi dan
sebagian besar uji laboratorium lain.
Ukuran panjang jarum yang dipilih adalah preferensi individu. panjang
yang paling sering digunakan adalah 1 dan 1,5 inci. Jarum pendek lebih mudah
Untuk mengontrol dan menyebabkan kecemasan kurang sabar. Untuk sistem
tabung dievakuasi, jarum yang tersedia untuk koleksi sampel tunggal dan multi. jarum
sampel multi-harus digunakan jika lebih dari satu tabung darah perlu dikumpulkan
untuk mencegah kebocoran darah ke pemegang jarum selama perubahan tabung.
jarum sampel tunggal atau kupu-kupu (bersayap infus set) jarum yang diproduksi
khusus untuk jarum suntik. adapter juga tersedia yang memungkinkan jarum kupu-
kupu untuk digunakan dengan standar tabung koleksi dievakuasi dan pemegang (lihat
gambar 2-1 dan 2-2). Pengaturan ini meningkatkan kontrol selama venipuncture sulit
dan memungkinkan pengisian langsung dari tabung pengumpul.
Antikoagulan
Ketika darah dikumpulkan dalam tabung kaca tanpa aditif, koagulasi biasanya
terjadi dan serum dapat dipisahkan dari sel darah dengan sentrifugasi berikutnya.
Namun, beberapa pemeriksaan laboratorium, termasuk yang dilakukan di
hematologi. Memerlukan darah utuh atau plasma, dalam hal antikoagulan
harus tercampur langsung dengan darah untuk mencegah pembekuan.
Antikoagulan yang paling umum digunakan untuk prosedur hematologi adalah
asam ethylenediaminetetraacetic (EDTA), natrium sitrat, dan heparin. Konsentrasi
yang tepat dari antikoagulan untuk volume darah diambil sangat penting, Dan
kesalahan yang signifikan dapat terjadi jika rasio darah ke antikoagulan tidak
benar.
EDTA (Ethylene Diamine Tetraacetic Acid)
Garam kalium dari EDTA adalah antikoagulan yang paling umum digunakan
dalam hematologi. Pembekuan darah dihambat oleh chelation atau mengikat ion
kalsium. Konsentrasi antikoagulan optimal adalah 1,5 mg / ml darah (lihat tabel 2-
2). Jumlah ini tidak memiliki efek buruk pada jumlah sel rutin dan
mempertahankan morfologi sel ketika film darah dibuat dalam waktu 2 jam dari
koleksi. Perlu dicatat bahwa mungkin ada tabung di pasar dengan lebih rendah,
konsentrasi EDTA tidak dapat diterima. di sisi lain, EDTA berlebihan menginduksi
sel darah merah (RBC) penyusutan, menyebabkan nilai hematokrit dan laju endap
darah menjadi palsu menurun. EDTA mencegah agregasi platelet dan karena itu
adalah antikoagulan pilihan untuk jumlah trombosit. Itu bukan antikoagulan
yang memuaskan untuk pengujian koagulasi karena menghambat reaksi fibrinogen-
trombin dan faktor V tidak stabil dalam kehadirannya
Natrium Sitrat
antikoagulan pilihan untuk kebanyakan pengujian hemostasis trisodium sitrat . plasma
sitrat mempertahankan labil faktor pembekuan V dan VIII lebih baik daripada
antikoagulan lain untuk studi agregasi platelet . spesimen plasma sitrat juga lebih
sensitif terhadap efek heparin dan karena itu lebih disukai untuk tes untuk memantau
terapi heparin . di masa lalu , baik natrium sitrat dan natrium oksalat digunakan
sebagai antikoagulan untuk pengujian hemostasis . keduanya menghambat koagulasi
dengan mengikat kalsium terionisasi , tetapi ketika oxalated plasma recalcified dalam
sistem tes, kompleks larut atau endapan yang terbentuk yang dapat mengganggu
deteksi titik akhir oleh instrumen yang mengukur perubahan densitas optik . untuk
alasan ini sodium oksalat tidak dianjurkan untuk pengujian hemostasis . natrium sitrat
tersedia dalam konsentrasi 3,2 % ( 0109 M ) OR 3,8 % ( 0129 M ) dalam tabung
koleksi dievakuasi . rasio darah ke antikoagulan sitrat sangat penting untuk hasil tes
koagulasi valid. rasio standar sembilan bagian dari darah ke salah satu bagian dari
antikoagulan ( 9:1) . rasio ini memuaskan untuk spesimen dengan jumlah yang relatif
meningkat dari sitrat terikat dalam campuran sitrat - plasma menyebabkan
perpanjangan palsu kali pembekuan , terutama untuk waktu protrombin ( PT ) dan
waktu tromboplastin parsial ( PTT ) tes . hal ini terjadi karena jumlah standar kalsium
digunakan untuk recalsify plasma dalam prosedur ini tidak memadai untuk
menonaktifkan sitrat terikat berlebihan selain memulai pembekuan spesimen.
HEPARIN
Heparin adalah mukopolisakarida asam yang bertindak dengan antitrombin III
dan menghambat reaksi dari semua protease serin koagulasi . konsentrasi optimal
adalah 15 sampai 20 U / ml darah . Heparin tidak memuaskan untuk film darah
preparationecause menyebabkan distorsi morfologi trombosit dan leukosit . di
samping . sebuah colorition kebiruan di latar belakang film bernoda darah dengan
noda Romanowsky akan terjadi karena pH -nya . heparin adalah antikoagulan pilihan
untuk uji kerapuhan osmotik jika darah defibrinated tidak digunakan dan untuk uji
retensi paltelet . Namun , darah heparinized tidak boleh digunakan untuk studi
koagulasi karena heparin ini efek penghambatan pada trombin . heparin juga dapat
menyebabkan kesalahan dalam menghitung sel otomatis . misalnya , trombosit dari
beberapa individu akan mengaglutinasi di hadapan heparin .
Pertimbangan Pemantapan Mutu – venipuncture
1) Pantangan puasa
tidak diperlukan untuk prosedur hematologi rutin , namun perlu dicatat bahwa film
darah yang terbuat dari darah yang diambil dari orang tak lama setelah ia telah makan
lemak akan memiliki lubang kecil di seluruh film yang disebabkan oleh kilomikron
2) Prosedur Persiapan Pasien
proses mengeluarkan darah menyebabkan stres dan kecemasan pada banyak pasien ,
yang dapat mengubah nilai-nilai uji laboratorium tertentu termasuk ketinggian sel
darah putih ( WBC ) count. Phlebotomist karena itu harus berusaha untuk meredakan
ketakutan tersebut dengan berkomunikasi dengan pasien secara tenang, profesional
, dan meyakinkan . kepercayaan pasien dapat diperoleh dengan meminta kerjasama.
bila memungkinkan. pasien harus diyakinkan bahwa meskipun tusukan itu
sendiri mungkin sedikit menyakitkan, itu akan menjadi lebih cepat.
Posisi pasien
Posisi pasien harus dicatat pada permintaan karena nilai caount darah dapat bervariasi
tergantung pada apakah pasien duduk atau berbaring. misalnya, hematokrit dapat
menurun rata-rata 8% karena hemodelution ketika seorang pasien berbaring.
sebaliknya, ketika seorang pasien turun dari tempat tidur, hemokonsentrasi terjadi.
jenis yang sama ini variasi terjadi dengan jumlah WBC.
Pemilihan lokasi
Secara umum vena dari fossa antecubital akan digunakan untuk venipuncture rutin.
ketika memilih situs, beberapa faktor harus dipertimbangkan. Daerah dengan
hematoma, luka bakar, bekas luka, atau edema harus dihindari. koleksi dari pembuluh
darah di lengan di sisi mana mastektomi dilakukan adalah kontraindikasi karena
kemungkinan lymphostasis. Jika seorang pasien yang menerima infus (iv) infus,
spesimen harus diambil dari lengan yang berlawanan. Situasi tertentu dapat
menghalangi koleksi dari lengan yang berlawanan. dalam situasi seperti ini, darah
harus diambil di bawah situs iv dari vena selain satu dengan garis iv dan setelah
cairan iv telah dihentikan selama 2 menit. Penghentian iv hanya boleh dilakukan oleh
perawat pasien atau dokter. 5 ml darah harus dikumpulkan dan dibuang sebelum
pengambilan spesimen untuk menghindari potensial pengenceran sampel dengan
cairan iv. bukti menunjukkan bahwa spesimen darah dapat diterima untuk hematologi
dan profil biokimia serum untuk semua analit kecuali glukosa dan fosfor dapat ditarik
di bawah garis iv selama infus atau dari jarum iv setelah infus iv telah dihentikan
selama 2 menit dan sejumlah kecil darah pertama dibuang. Pada semua kasus ketika
mengambil spesimen dari bawah situs iv, phlebotomist harus mematuhi prosedur yang
direkomendasikan oleh laboratorium individu. Dari sisi mana spesimen diambil harus
dicatat pada formulir tes permintaan, Vena yang sulit untuk menemukan dapat dibuat
lebih menonjol dengan lembut memijat lengan dari pergelangan tangan ke siku dan
pemanasan atau menekan situs tusukan. Tangan yang kuat memompa oleh
pasien, namun dapat mengakibatkan hemokonsentrasi dan harus dihindari.
Penggunaan Tourniquet
Beberapa bentuk torniket tersedia. yang paling umum digunakan adalah pice lentur
lateks datar. torniket velcro, seraket, dan manset tekanan darah adalah jenis
tambahan. Yang seraket (Propper perusahaan manufaktur, inc, long island, NY)
terbuat dari kain dan dijamin menggunakan sabuk pengaman seperti alat (gambar 2-
1). Hal ini memungkinkan phlebotomist untuk sebagian melepaskan tekanan
vena, mencegah hemokonsentrasi, tanpa mengeluarkan tourniquet dari lengan
pasien. Tourniquet dapat dengan mudah diperketat jika diperlukan. Tourniquet tidak
boleh dibiarkan selama lebih dari 1 menit karena penggunaan yang terlalu lama
dapat menyebabkan hemokonsentrasi dan peningkatan aktivitas fibrinolitik. Jika
tourniquet yang tersisa di lengan selama lebih dari 1 menit ketika menemukan
vena, itu harus dihapus dan diterapkan kembali setelah 2 menit telah berlalu.
untuk menghindari aplikasi yang berkepanjangan, boleh dilakukan pengulangan
kembali tourniquet hanya setelah situs tersebut telah dibersihkan dan hanya sebelum
penyisipan jarum. Selama pengumpulan tourniquet harus dihapus sesegera mungkin
setelah aliran darah yang memadai ke dalam perangkat koleksi telah ditetapkan.
Aseptik sisi venipuncture
Sisi venipuncture harus dibersihkan secara menyeluruh dengan alkohol persiapan pad
komersial atau bola kapas atau kasa direndam dalam 70% isopropanol.
Mengeringkan area dengan kasa steril atau dengan udara. Sisa alkohol di lokasi
venipuncture, selain dapat menyebabkan rasa sakit pada pasien, juga dapat
menyebabkan hemolisis.
Pengumpulan Spesimen
Tabung pengumpul evacuated biasanya tidak akan mengisi sepenuhnya, sehingga
sebagian terisi kecil tetap. Namun, tabung harus diisi sebanyak vakum mereka
memungkinkan untuk menghindari rasio yang tidak tepat darah ke aditif. Tabung
dievakuasi mengandung antikoagulan atau addtives lain harus dicampur segera
(terutama jika K2EDTA digunakan) setelah pengangkatan dari pemegang atau setelah
mengisi dengan jarum suntik dengan lembut inversi 5 sampai 10 kali. Jika beberapa
tabung dikumpulkan, satu tabung bisa dicampur sementara yang lain hanya diisi
dengan darah. Tidak mencampur atau kocok kuat-kuat karena dapat
menyebabkan hemolisis. Ketika mengumpulkan beberapa tabung, penting untuk
melakukannya dalam urutan yang benar. urutan sebagai berikut. urutan berikut ini:
1) tabung kultur darah steril
2) tabung nonadditive
3) tabung yang berisi antikoagulan (mengumpulkan spesimen sitrat pertama diikuti
oleh heparin, EDTA, dan Oksalat atau fluoride
studi telah menyarankan bahwa urutan menarik dari beberapa tabung aditif ini penting
karena aditif dalam satu tabung dapat mencemari spesimen dikumpulkan ke dalam
tabung aditif berikutnya. sumber kesalahan di venipunctures diringkas dalam tabel 2-3
Bila menggunakan jarum suntik pertimbangan dasar yang sama seperti untuk metode
tabung dievakuasi berlaku. Namun, darah harus ditransfer dari syiringe ke tabung
dievakuasi. untuk non-hemostasis menguji jarum suntik dengan hati-hati
dimasukkan melalui tabung stopper, memungkinkan vakum untuk mengambil darah
perlahan-lahan ke dalam tabung.
Tabel. 2-3
Sumber Kesalahan Dalam Venipuncture
1 . kesalahan dalam persiapan venipuncture
- Identifikasi pasien yang tidak benar
- Kegagalan kepatuhan pasien terhadap pembatasan diet
- Tidak menenangkan pasien sebelum pengumpulan darah
- Penggunaan peralatan yang tidak tepat dan persediaan
- Metode tidak pantas pengumpulan darah
2 . kesalahan dalam prosedur venipuncture
- tidak mengeringkan area tusukan setelah membersihkan
dengan alkohol
- Jarum bevel menyisipkan sisi
- Penggunaan jarum yang terlalu kecil, menyebabkan hemolisis
- Venipuncture di area yang tidak diperbolehkan (ex: diatas iv)
- berkepanjangan aplikasi tourniquet
- salah order tabung draw
- tidak mencampur darah dalam tabung berisi aditif segera
- Menarik kembali jarum suntik plunger terlalu tegas
- tidak melepaskan tourniquet sebelum penarikan jarum
3 . kesalahan setelah venipuncture selesai
- Kurang penekanan ke area bekas venipuncture
- Getaran kuat dari anticoagulan spesimen darah
- Memaksa darah melalui jarum suntik ke tabung
- Mislabeling tabung
- Kesalahan pelabelan yang tidak preventif penyakit menular
- Kesalahan input tanggal, waktu , dan inisial pada permintaan
- Transportasi lambat spesimen ke laboratorium
Darah tidak harus dipaksa melalui jarum suntik karena hal ini dapat menyebabkan
hemolisis. Jika tabung non dievakuasi digunakan, jarum suntik dan tabung cap
dikeluarkan dan darah dibiarkan mengalir perlahan di sisi tabung. karena ada
apotensial untuk aktivasi koagulasi dalam jarum suntik, urutan mengisi tabung
dievakuasi setelah koleksi jarum suntik berbeda dari yang diikuti ketika mengisi
tabung langsung menggunakan jarum dan dudukan. Dalam kasus terakhir, perangkat
pengumpulan kultur darah diisi pertama diikuti dengan antikoagulan yang
mengandung tabung dalam urutan yang tercantum di atas. Akhirnya, mengisi setiap
tabung non antikoagulan yang mengandung yang akan diproses untuk koleksi serum.
PENGUMPULAN SPESIMEN METODE TUSUKAN KAPILER
Pertimbangan Jaminan Kualitas - Tusukan Kapiler
Darah vena lebih disukai untuk kulit atau spesimen kapiler tusukan untuk sebagian
besar tes hematologi. Namun, ada beberapa situasi di mana tusukan kulit harus
digunakan untuk mendapatkan spesimen darah. bayi, terutama borns baru, memiliki
volume darah lebih kecil dibandingkan orang dewasa, menggambar darah dengan
venipuncture rutin setiap hari dapat dengan cepat menyebabkan anemia rumah sakit-
diinduksi. tusuk kulit juga merupakan sarana yang jauh lebih aman pengumpulan
darah. venipuncture seringkali sulit dan bahkan berbahaya bila dilakukan pada anak-a
nak sangat kecil dan bayi. untuk orang dewasa, tusuk kulit mungkin diperlukan karena
obesitas, luka bakar, atau pembuluh darah yang sangat kecil atau rusak parah, atau
ketika cairan iv mengalir ke satu-satunya vena diakses. tusuk kulit juga digunakan
untuk menyimpan pembuluh darah pasien yang menerima kemoterapi dan pada orang
tua bila memungkinkan. darah yang dikumpulkan oleh tusukan kulit merupakan
campuran dari kapiler, vena, dan darah arteri dan juga berisi interstitial dan cairan
intraseluler, oleh karena itu, nilai-nilai laboratorium diperoleh mungkin berbeda dari
yang diperoleh pada spesimen vena. misalnya, jumlah eritrosit, hematokrit,
hemoglobin, dan platelet yang rendah pada tusukan kulit harus dicatat pada daftar
permintaan. mengacu pada referensi standar untuk prosedur yang tepat
Sumber Kesalahan
Spesimen hemolyzed merupakan sumber umum kesalahan, terutama dalam spesimen
darah yang diperoleh dari tusukan kulit bayi. eritrosit bayi lebih rentan dibandingkan
orang dewasa, dan nilai-nilai hematokrit mereka jauh lebih tinggi, sehingga risiko
hemolisis agak lebih besar. sumber penting lainnya dari kesalahan termasuk
kegagalan untuk mengeringkan situs sepenuhnya setelah membersihkan dengan
alkohol, tusukan kulit terlalu dalam, kegagalan untuk menghapus penurunan pertama
darah, memijat kuat atau memerah susu dari daerah menyebabkan hemolisis, dan
menangkap disengaja gelembung udara dalam tabung kapiler atau unopette (Becton
dickinson, rutherford, NJ) pipet yang digunakan untuk pengumpulan jumlah spesimen
yang tepat (misalnya, untuk menghitung trombosit) aliran darah yang memadai untuk
pengumpulan volume spesimen yang diperlukan. meremas berlebihan bisa
mencairkan spesimen, dengan cairan jaringan sehingga hasil tes tidak valid. juga
harus berhati-hati untuk menggunakan lanset tidak lebih dari 2,4 mm untuk tusukan
tumit bayi untuk menghindari risiko osteomyelitis
sejumlah perangkat yang tersedia saat ini yang memungkinkan jumlah yang lebih
besar dari darah kapiler yang akan dikumpulkan yang dapat dengan mudah
dikumpulkan dalam tabung kapiler atau Unopettes; ini termasuk microtainer dan
microvette, capiject dan samplette. perangkat ini mungkin aditif bebas atau
mengandung aditif mirip dengan tabung koleksi dievakuasi. saat menggunakan
perangkat ini sangat penting untuk mengikuti petunjuk produsen tepat untuk mengisi
volume maksimum dan minimum dan pencampuran. jika instruksi ini tidak diikuti,
hasil tes kemungkinan akan berubah karena rasio yang tidak tepat aditif untuk
spesimen atau antikoagulan tidak efektif urutan imbang juga penting whe
mengumpulkan spesimen oleh punture kulit. spesimen untuk jumlah trombosit
pengguna harus dikumpulkan terlebih dahulu. film darah perifer dapat dilakukan
berikutnya, jika diperlukan, diikuti dengan pengisian perangkat antikoagulan
mengandung. EDTA anticoagulated tabung harus diisi terlebih dahulu, diikuti dengan
tabung antikoagulan lain yang mengandung. kontainer yang akan diproses untuk
koleksi serum harus diisi lalu.
PENGAMBILAN SPECIMEN DARI kateter
Phlebotomist paling tidak mengumpulkan sediaan darah dari kateter berdiamnya.
Namun, phlebotomist harus menyadari tuntutan khusus untuk koleksi tersebut untuk
membantu anggota lain dari tim kesehatan memberikan laboratorium dengan
spesimen yang cocok . umumnya volume tertentu darah harus dibuang (volume
buangan ) sebelum mengisi tabung spesimen .
penelitian telah menunjukkan perubahan yang signifikan dalam hasil tes hematologi
ketika volume membuang kurang dari jumlah yang optimal dianjurkan. hematokrit
secara signifikan lebih tinggi dan lebih rendah ketika WBC menghitung volume
membuang kurang dari empat kali kateter volume ruang mati. Dalam hasil studyPTT
lain inversly sebanding dengan membuang volum dihapus dari jalur arteri heparinized
. volume membuang tergantung pada panjang dan diameter kateter. Mengumpulkan
darah dari kateter untuk spesimen hemostasis tidak dianjurkan. Namun jika itu tidak
dapat dihindari, mungkin perlu untuk membuang sebanyak 30 ml, terutama jika
waktu trombin pembekuan ( Bab.49 ) akan ditentukan.
PENGUMPULAN SPESIMEN UNTUK PEMERIKSAAN KOAGULASI
Pertimbangan Pemantapan Mutu
Bagian ini berfokus pada aspek proses mengeluarkan darah yang secara khusus
berlaku untuk mendapatkan dan memproses spesimen darah untuk hemostasis.
Venipuncture nontraumatic adalah tujuan setiap saat spesimen darah yang
dikumpulkan, tetapi penting untuk mendapatkan hasil yang valid dari pengujian
hemostasis. Perhatian utama adalah penghapusan aktivasi prematur dari proses
koagulasi sebelum spesimen dapat dievaluasi dalam prosedur pengujian tersebut.
penyebab aktivasi tersebut termasuk kontaminasi spesimen dengan tromboplastin
jaringan, kontainer, suhu yang tidak tepat, dan hemolisis.
Tromboplastin jaringan adalah gumpalan-mengaktifkan zat ampuh ditemukan dalam
cairan yang melarikan diri dari sel terluka dan ruang jaringan. ketika jaringan
mengalami trauma atau pembuluh darah terganggu atau dipotong, zat ini
mengaktifkan koagulasi jalur ekstrinsik (chap.47) dan menyebabkan hasil tes
erronous. bahkan sedikit kontaminasi dengan tromboplastin jaringan sudah cukup
untuk mempengaruhi hasil. hemolisis adalah pelepasan hemoglobin dari sel darah
merah pecah ke dalam plasma. sel darah merah hemolyzed bertindak seperti
tromboplastin jaringan untuk mengaktifkan faktor pembekuan plasma. ketika
hemolisis terjadi dalam darah, masalah teknis dengan proses pengumpulan biasanya
penyebabnya. efek permukaan kaca pada hemostasis yang terkenal. faktor kontak
(prekalikrein-fletcher, XII dan XI) diaktifkan prematur melalui kontak dengan kaca,
menyebabkan pemendekan waktu koagulasi tes yang digunakan untuk menilai baik
intrinsik dan ekstrinsik koagulasi jalur. bahan dianjurkan untuk mengumpulkan,
mengangkut, dan menyimpan spesimen darah untuk pengujian hemostasis adalah
plastik, polystyrene, atau kaca berlapis silicon.
Venipuncture yang buruk dapat menyebabkan hasil tes yang salah. Fakta bahwa
darah yang diperoleh dengan teknik pengumpulan yang salah, sering tidak
memuaskan untuk studi biokimia atau sitologi dapat menyebabkan phlebotomist
untuk percaya bahwa hal yang sama berlaku untuk studi untuk pembekuan darah .
idealnya , seseorang yang akrab dengan tes koagulasi harus mendapatkan darah untuk
studi pembekuan , atau anggota dari laboratorium koagulasi harus mengawasi koleksi.
Pilihan lain akan mengambil darah tersebut secara terpisah daripada sebagai bagian
dari koleksi besar untuk tes lainnya . karena pendekatan ini sering tidak praktis , dapat
diterima untuk spesimen untuk pengujian koagulasi yang bisa ditarik oleh personel
terlatih dan sebagai bagian dari kelompok spesimen asalkan standar dan pedoman
untuk koleksi tersebut khusus diikuti . disarankan agar darah kapiler dihindari untuk
metode tradisional pengujian koagulasi . kadang-kadang Namun , hanya darah kapiler
dapat diperoleh dari pasien . tes PT dilakukan pada darah seperti mungkin dapat
diandalkan disediakan spesimen diperoleh dengan cepat dan antikoagulan
immediatelly . kemajuan terbaru dalam pengujian perangkat samping tempat tidur
memungkinkan penggunaan spesimen tusuk kulit untuk pengujian koagulasi . saat
menggunakan perangkat ini petunjuk dari produsen harus diikuti
Oklusi vena atau stasis dapat terjadi selama pengumpulan spesimen jika tourniquet
diterapkan terlalu ketat atau untuk jangka waktu (lebih dari 1 menit). ketika aliran
arteri atau aliran balik vena terganggu, ada aktivasi sistem fibrinolitik dan faktor
pembekuan. untuk meminimalkan stasis tersebut dan hemokonsentrasi yang juga
berkembang, tourniquet harus dibebaskan segera setelah vena yang dimasukkan dan
darah mulai mengalir ke perangkat koleksi,
Peralatan
Banyak jenis torniket dapat digunakan, tetapi karena peningkatan stasis adalah
kekhawatiran, yang tourniquet seraket (lihat di atas dan ara 2-1) atau sejenis
perangkat dianjurkan. penggunaan ukuran jarum yang tepat adalah penting, amall
jarum pengukur yang lebih mungkin menyebabkan hemolisis. ketika mengumpulkan
darah untuk tes koagulasi, jarum 20-gauge ini paling sering digunakan, tetapi ketika
lebih dari 20 ml darah yang akan ditarik, a 19 - gauge jarum dapat preffered. untuk
pasien anak atau orang-orang dengan pembuluh darah kecil, ukuran yang lebih kecil
(21 gauge) mungkin dipilih. jarum harus dari jenis sekali pakai dan dilapisi dengan
silikon polimer. jarum ini membuat penetrasi kulit dan masuk vena halus dengan rasa
sakit yang minimal, trauma, atau aktivasi faktor koagulasi. spesimen untuk tes
koagulasi harus dikumpulkan dalam tabung dievakuasi dilapisi silikon atau suntik
plastik untuk meminimalkan efek dari aktivasi kontak koagulasi. tabung dievakuasi
dilapisi silikon yang mengandung sitrat antikoagulan trisodium dapat digunakan
setiap kali sitrat plasma diperlukan.
Pengumpulan sampel
Venipuncture cepat bersih mencegah tromboplastin jaringan atau udara masuk
spesimen. jika ada kesulitan dalam melakukan venipuncture itu, upaya harus
dibatalkan, situs baru harus digunakan. untuk tes koagulasi umum seperti tes PT dan
PTT, koleksi tabung dievakuasi rutin memuaskan selama kontaminasi dengan cairan
jaringan dihindari. darah untuk pengujian koagulasi tidak boleh tabung pertama
dikumpulkan karena tromboplastin jaringan dari tusukan awal dapat mencemari
spesimen dan membatalkan hasil koagulasi. jika hanya tes koagulasi yang
diperintahkan, "teknik dua Syring" dijelaskan di bawah ini dianjurkan.
Teknik 2 spuit
Metode dua jarum suntik koleksi darah meminimalkan pengenalan tromboplastin
jaringan spesimen. istilah ini mengacu pada praktek menggambar sejumlah kecil
darah ke dalam jarum suntik atau tabung dievakuasi dan perubahan untuk jarum
suntik kedua atau tabung dievakuasi ditentukan untuk tes koagulasi yang akan
dilakukan. ini bilasan jarum cairan jaringan yang mungkin telah diperkenalkan selama
venipuncture tersebut. Jarum kupu-kupu dianjurkan bukannya pakai standar karena
penggunaan jarum kupu-kupu kurang cenderung mengakibatkan penghapusan
disengaja jarum dari vena saat beralih perangkat pengumpulan. penggunaan jarum
kupu-kupu juga dianjurkan ketika darah harus ditarik langsung ke jarum suntik yang
mengandung antikoagulan atau beberapa solusi beracun lainnya, seperti formalin
digunakan dalam beberapa prosedur untuk mengevaluasi hiperaktif platelet. Pipa
panjang yang menghubungkan mencegah infus disengaja solusi tersebut ke dalam
vena, fasilitas prosedur dan mengurangi pissibility disengaja tusukan jarum untuk
phlebotomist.
Prosedur menggunakan tabung dievakuasi
Untuk spesimen koagulasi, sistem dievakuasi pengumpulan darah adalah lebih baik
untuk jarum suntik karena darah berjalan langsung dari vena ke tabung dan segera
dicampur dengan antikoagulan, sehingga mengurangi kemungkinan spesimen beku
(gbr. 2-2). Ini merupakan faktor penting ketika mengumpulkan darah untuk
pemeriksaan hemostatik yang mencakup evaluasi trombosit dan faktor pembekuan
dan memerlukan sebanyak 30 sampai 50 ml darah. jika spesimen untuk pengujian
selain hemostasis yang diperlukan, urutan disarankan menarik untuk tabung
dievakuasi dibahas sebelumnya harus diikuti. Luer adaptor multi-sampel (fig 2-1)
harus digunakan. setelah jarum masuk vena, tourniquet dilepaskan dan sistem
dibersihkan dari tromboplastin jaringan dengan menggambar 5 ml darah ke
dalam tabung dievakuasi non-aditif. darah ini dapat digunakan untuk tes lain yang
membutuhkan serum, atau mungkin dibuang. spesimen untuk tes yang
membutuhkan palsma citrated diambil berikutnya. Jika tes fungsi platelet yang
diperintahkan, bevel jarum masih dalam vena, pipa yang terjepit untuk
menghentikan aliran darah, pemegang jarum dan Luer adaptor dikeluarkan dari
adaptor kupu-kupu tabung, dan jarum suntik plastik terpasang. Darah ditarik ke dalam
jarum suntik ini dan dibagikan ke tabung yang sesuai.
Prosedur menggunakan jarum suntik
Ketika spesimen yang sedang ditarik langsung ke jarum suntik, tourniquet dilepaskan
dan sekitar 5 ml darah ditarik ke dalam jarum suntik pertama setelah vena
dimasukkan. sebelum jarum suntik yang diaktifkan, kasa steril ditempatkan di bawah
hub jarum untuk menyerap darah yang mungkin melarikan diri. Dengan jarum di
pembuluh darah, jarum suntik pertama dengan hati-hati terlepas dari jarum dan
diganti dengan jarum suntik kedua. Untuk pengujian koagulasi darah yang masuk ke
dalam alat suntik ini dan ditransfer segera ke dalam tabung yang sesuai.
untukmenghindari gelembung udara dan buih dari spesimen, jarum harus aman fifted
pada jarum suntik. Ketika darah sedang disedot dengan jarum suntik, plunger harus
ditarik pada tingkat yang sama dengan aliran darah. Jika angka ini lebih dari yang
dibutuhkan untuk aspirasi darah, gelembung udara akan masuk jarum suntik dan
menyebabkan hemolisis. Aspirasi dipaksa juga dapat menyebabkan pembuluh darah
runtuh dan mengakibatkan pelepasan tiba-tiba gas dari sel darah merah, juga
mengakibatkan hemolisis. karena ada risiko memerciki darah menggunakan teknik
ini, pelindung wajah dianjurkan.
Memindahkan Dan Pencampuran Spesimen
Untuk menghindari buih dan hemolisis dari spesimen, darah tidak boleh dikeluarkan
melalui jarum. segera setelah venipuncture selesai, jarum harus aman dan hati-hati
dihapus dari jarum suntik. darah secara perlahan diusir ke dalam tabung koleksi
dengan memungkinkan untuk lari ke sisi tabung. spesimen dipindahkan ke tabung
yang mengandung antikoagulan harus tutup dan dengan hati-hati dicampur dengan
lembut membalik tabung 5 sampai 10 kali. darah diambil langsung ke tabung
dievakuasi sebagian dicampur dengan antikoagulan ketika darah memasuki tabung,
tetapi untuk memastikan pencampuran yang menyeluruh, tabung harus lembut
terbalik 5 sampai 10 kali segera setelah pengangkatan dari pemegang jarum.
Pengolahan Dan Penyimpanan Spesimen Hemostasis
Perubahan yang terjadi setelah rentang darah dikumpulkan dari aktivasi permukaan
koagulasi (yang mengakibatkan mempersingkat waktu pembekuan) peningkatan
labilitas faktor V dan VIII (yang dapat memperpanjang waktu pembekuan).
perubahan tersebut menjadi sumber signifikan dari kesalahan dalam pengujian jika
tidak ada tindakan yang dilakukan untuk mengurangi dan mengendalikan mereka saat
memproses dan menyimpan specimen.
Pengaruh pH
Perubahan ph spesimen, dimediasi oleh hilangnya karbondioksida, dapat
mempengaruhi hasil dengan menyebabkan perpanjangan waktu pembekuan. karbon